세포유전학검사
말초혈액(Peripheral blood ; PB) 검체
Sodium heparin 튜브에 혈액 5mL(소아 3mL)을 무균적으로 채취하여 전도혼합 한 후 응고되지 않도록 합니다.
주의사항
  • Sodium heparin 이외의 항응고제는 세포 분열능 저하로 인하여 배양에 실패할 확률이 높습니다.
  • 환자의 임상소견 및 추정 진단에 따라 검사 방법 자체가 달라지므로 반드시 의뢰서에 기록합니다.
  • 검체 채취부터 배양까지 24시간 이상이 경과되면 검사에 실패할 확률이 높습니다.
  • 검체 보관 및 운송은 실온 상태로 합니다.
태아조직(Products of conceptus ; POC) 검체
태아 조직은 오염될 확률이 매우 높으므로 무균적으로 채취하여야 하며 전용용기에 넣어 의뢰 하시기 바랍니다.
주의사항
  • 자궁 내에서 사망한지 24시간 이상이 경과한 검체는 배양에 실패할 확률이 높습니다.
양수(Amniotic fluid ; AF) 검체
검체에 모체 세포가 혼입되는 것을 방지하기 위해 채취시 처음 약 2mL 정도를 반드시 버린 다음 20~30mL 정도의 양수를 무균적으로
채취하고 이를 15mL Conical 튜브 2 Bottle로 옮겨 의뢰하시기 바랍니다.
주의사항
  • 양수 내 태아 유래 세포가 적은 경우(원심 후 침전물이 육안으로 확인이 안됨)와 육안적으로 검체의 색깔이 붉거나(혈액이
    혼입되었음을 의미) 짙은 갈색인 경우는 배양에 실패할 수도 있습니다.
융모막(Chorionic villi sampling ; CVS) 검체
융모막 20~40mg을 채취하여 융모막 전용용기에 넣어 의뢰하시기 바랍니다.
주의사항
  • Zoom-stereo microscope으로 관찰하여 순수한 융모막이 적을 경우에는 직접법, 배양법을 병행할 수 없고, 단지 배양법만을 시행함 으로 모체 세포의 오염 가능성이 높아집니다. 그리고 검체량 부족으로 인하여 결과가 지연되거나 혹은 배양에
    실패할수 도 있습니다.
제대혈(Cord blood) 검체
제대혈은 응고가 잘 되므로 채취 후 즉시 Sodium heparin 튜브에 넣고 전도혼합 하여 응고가 되지 않도록 주의하시기 바랍니다.